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實驗干貨 | 原代細(xì)胞分離培養(yǎng)(小鼠結(jié)腸細(xì)胞為例)

發(fā)布時間:2024-02-22    瀏覽次數(shù):2338

01 簡介

原代細(xì)胞分離培養(yǎng)是一項實驗技術(shù),它涉及從生物體中提取組織或細(xì)胞,并將它們轉(zhuǎn)移到體外環(huán)境中進(jìn)行培養(yǎng)。這些來源包括各種組織器官、外周血和胚胎等。在培養(yǎng)過程中,原代細(xì)胞的生長速度相對較慢,通常在培養(yǎng)的前10代內(nèi)停止生長。因此,通常將培養(yǎng)的細(xì)胞歸類為原代細(xì)胞培養(yǎng),這些細(xì)胞包括第1到第10代的細(xì)胞。

原代細(xì)胞保持了體內(nèi)原始細(xì)胞的生物學(xué)特性,最接近于體內(nèi)的生長特性。因此,它們?yōu)檠芯可矬w細(xì)胞的生長、代謝和繁殖提供了有力的工具。此外,原代細(xì)胞培養(yǎng)還為精準(zhǔn)醫(yī)療的腫瘤診治模式和個體化精準(zhǔn)用藥提供了支持。

常見的原代細(xì)胞類型包括上皮細(xì)胞、內(nèi)皮細(xì)胞、成纖維細(xì)胞、角質(zhì)形成細(xì)胞、黑色素細(xì)胞、神經(jīng)元、星形膠質(zhì)細(xì)胞、肝細(xì)胞、骨骼肌細(xì)胞、平滑肌細(xì)胞、成骨細(xì)胞、肌細(xì)胞、軟骨細(xì)胞、脂肪細(xì)胞、滑膜細(xì)胞、毛細(xì)胞、血細(xì)胞和干細(xì)胞。

原代細(xì)胞

02 實驗原理

在原代細(xì)胞分離培養(yǎng)中,首先從動物體內(nèi)取出各種組織,然后采用不同的方法,如酶消化(通常使用胰蛋白酶/膠原酶)、螯合劑(通常是EDTA)或機械分散,將組織分散成單個細(xì)胞。這些單細(xì)胞被放置在適當(dāng)?shù)呐囵B(yǎng)基中進(jìn)行培養(yǎng),以在離體環(huán)境中存活、生長和繁殖。這個過程稱為原代培養(yǎng),主要包括取材、分離和培養(yǎng)三個步驟。

以小鼠結(jié)腸細(xì)胞為例,為了提高目標(biāo)細(xì)胞的純度,原代提取的細(xì)胞通常與其他細(xì)胞混合。通過采用生物酶梯度消化和差速貼壁等方法,可以獲得纖維組織和上皮組織的高純度目標(biāo)細(xì)胞。具體地,使用膠原酶 I 和分散酶 II 消化結(jié)腸組織可分散細(xì)胞間質(zhì),而差異消化和差速貼壁方法則能有效去除成纖維細(xì)胞,最終獲得高度純凈的結(jié)腸上皮細(xì)胞。

03 材料與儀器

 含有雙抗的DMEM培養(yǎng)基、5 g/L胰蛋白酶、Buffer溶液(5% RPMI1640 + 5% FBS + 10mM HEPES)、消化液(DMEM培養(yǎng)基溶解膠原酶I濃度為 0.1%,分散酶II濃度為 0.3%)、無菌剪刀、無菌鑷子、100 μm 細(xì)胞過濾器、細(xì)胞培養(yǎng)瓶、細(xì)胞培養(yǎng)板。

04 實驗步驟

1. 通過使C57BL/6小鼠頸椎脫臼死亡,然后用適量的酒精噴灑和Buffer滴加的方式,快速分離結(jié)腸。

2. 沿著腸系膜進(jìn)行剪開,利用DMEM培養(yǎng)基清洗結(jié)腸,以去除其中的腸腔內(nèi)容物。

3. 使用無菌剪刀將結(jié)腸組織剪成約1mm3大小的碎片。

4. 使用10 mL 0.1%膠原酶I和3%分散酶II對組織進(jìn)行消化,在37℃的搖床上消化25分鐘。

5. 進(jìn)行吹打混勻,并通過100μm細(xì)胞過濾器過濾,以收集上清液。

6. 采用相差消化法和差速貼壁法去除成纖維細(xì)胞。

7. 加入1 mL培養(yǎng)基,將細(xì)胞懸浮后接種于含有完全培養(yǎng)基的培養(yǎng)瓶中,在37℃、5% CO2的細(xì)胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。

8. 當(dāng)細(xì)胞生長至培養(yǎng)瓶的80-90%時,使用5 g/L胰酶消化液進(jìn)行消化,然后將其接種于細(xì)胞培養(yǎng)板中。

05 「原代培養(yǎng)」注意事項與常見問題

1.注意事項

原代細(xì)胞培養(yǎng)具有較高的成本,并對培養(yǎng)條件有嚴(yán)格要求。因此,在培養(yǎng)過程中需要特別注意保持無菌環(huán)境,并盡可能去除目標(biāo)細(xì)胞以外的其他細(xì)胞。

1.在實驗開始前,必須對所有器械進(jìn)行消毒處理,并進(jìn)行高壓滅菌,液體則需要進(jìn)行無菌過濾處理。
2.酶消化液必須立即現(xiàn)用現(xiàn)配,以確保其活性。
3.在實驗過程中,需要充分消化組織以確保檢測到足夠數(shù)量的細(xì)胞。
4.同時,也要盡可能充分去除成纖維細(xì)胞。
5.在后續(xù)的培養(yǎng)過程中,必須保持全程無菌操作,以確保培養(yǎng)環(huán)境的純凈性。


3.常見問題

Q: 保存血清最好的方法是什么?
A: 建議將血清存放在 -5℃ 至 -20℃的溫度范圍內(nèi)。如果存放在4℃,請不要超過一個月。如果無法一次使用完整瓶血清,建議將血清經(jīng)過無菌分裝后存放在適當(dāng)?shù)臏缇萜髦校缓笤俜呕乩鋬觥?/span>

Q: 如何解凍血清以保持其最佳培養(yǎng)狀態(tài)?
A: 建議將血清從冷凍箱中取出后,首先放置在2~8℃的冰箱中使其融化,然后在室溫下使其完全融化。但務(wù)必要注意,在融解過程中必須規(guī)律地?fù)u晃以確保均勻。

Q: 血清解凍后發(fā)現(xiàn)有絮狀沉淀物出現(xiàn),應(yīng)該如何處理?
A: 血清中出現(xiàn)沉淀物有很多原因,但最常見的是由于血清中脂蛋白的變性所致。此外,血清解凍后血纖維蛋白的存在也可能導(dǎo)致沉淀物的生成。


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